摘要: 目的 探讨蒺藜水提物重复给药后对大鼠体质量、血液指标及组织病理学的影响。方法 将120只SD大鼠(雌雄各半)随机分为对照组和蒺藜水提物低、中、高剂量组。对照组灌胃给予动物饮用水，低、中、高剂量组分别每日灌胃给予蒺藜水提物8.50、17.0、34.0 g生药/(kg·bw),连续给药30 d,观察给药期及恢复期大鼠的一般状况、大鼠体质量、血液指标及肝组织病理学改变。结果 给药期间各组大鼠均未出现明显不良反应，体质量增长正常。给药30 d后，与对照组比较，雄鼠中、高剂量组红细胞(RBC)升高(P<0.05,P<0.01)、红细胞平均体积(MCV)降低(P<0.05,P<0.01);恢复期雌鼠低剂量组血小板(PLT)降低(P<0.01),雄鼠低剂量组平均血红蛋白量(MCH)降低(P<0.05)。恢复期雌鼠低、中、高剂量组丙氨酸转氨酶(ALT)降低(P<0.05,P<0.05,P<0.01);中剂量组γ-谷氨酰转肽酶(GGT)降低(P<0.05)。组织病理学检查发现，给药30 d肝组织病理学检查可见低、中剂量组灶状炎细胞浸润，高剂量组灶状炎细胞浸润及大量的脂肪细胞，肝细胞脂肪变性；恢复期低、中剂量组病变程度明显比给药期减轻，未见脂肪变性；高剂量组可见肝灶状炎细胞浸润及大量脂肪细胞。结论 长期大剂量给予蒺藜水提物可导致大鼠肝病理学改变，其肝毒性具有剂量和时间依赖性，其最大无毒性剂量为17.0 g/(kg·bw)(临床用量的100倍)。临床使用蒺藜水提物时需严格控制剂量和疗程，并密切监测肝功能相关指标。

摘要: 目的 比较分析现行国家标准生化标记法与一代测序检测小鼠SNP分子标记法在BALB/c小鼠遗传质量评价中的异同，为近交系小鼠的遗传质控提供参考。方法 利用14个小鼠常规生化标记位点和35个SNP常用遗传分析位点，对同一批BALB/c小鼠进行遗传质量检测，从结果评价、变异检出度、染色体覆盖率、动物福利、操作便捷性、方法重复性等方面对两种方法进行比较。结果 两种方法均可检出6只BALB/c中2、5、6号小鼠出现了变异，但生化标记法仅检出了4个位点的纯合变异，SNP分子标记法检出了9个位点的纯合变异和3个位点的杂合变异。进一步比较发现，SNP标记法在染色体覆盖率、动物福利、操作便捷性、方法重复性上均优于生化标记检测法。结论 SNP标记法在近交系小鼠遗传质控评价中比现行国家标准生化标记检测法更具优势，可作为近交系实验动物的标准化遗传质控技术。

摘要: 目的 确定小鼠细小病毒(MVM)有效灭活时间，保证实验室能力验证样本的生物安全性；通过MVM核酸检测能力验证实施计划，了解我国实验动物相关检测机构的检验能力，促进实验动物质量检测水平和能力的提高。方法 通过采取不同温度和不同时间对已知病毒滴度的MVM进行水浴加热灭活。经过灭活的病毒一部分用于病毒滴度的检测，一部分通过荧光PCR方法用于核酸的检测。取MVM核酸阴性的小鼠粪便混悬液作为阴性样品，将灭活的病毒加入到MVM核酸阴性的小鼠粪便混悬液中制备能力验证阳性样品。样品经过均一性、稳定性检验合格后，采用随机编号，发放给参加单位，并对参加单位提交的结果进行汇总分析。结果 当灭活温度达100℃,灭活时间不超过1 h,能有效灭活病毒，同时核酸检测结果批内变异系数均<5%,差异不显著。参加单位结果满意率为96.4%(27/28)。结论 当灭活温度达100℃,灭活时间不超过1 h, MVM核酸序列保留完整，核酸检测结果不影响实验。参加实验室有96.4%具备了MVM核酸检测能力，有3.6%的实验室能力有待提高；还有少部分实验室在操作规范和原始记录的书写规范方面有待提升。

摘要: 目的 本实验旨在探究大林姬鼠的发情周期及其发情周期不同阶段性激素水平的变化规律。方法 选取处于繁殖期的雌性大林姬鼠，采用外阴观察法和阴道脱落细胞涂片法相结合，确定大林姬鼠的发情周期。提取发情周期不同阶段的大林姬鼠血清，使用酶联免疫吸附法(ELISA)检测雌激素、孕激素及促黄体生成素的浓度。同时，采用苏木精-伊红(HE)染色法观察大林姬鼠在发情周期不同阶段的子宫及卵巢形态学变化。最后，提取大林姬鼠子宫和卵巢组织，通过qPCR技术分析发情周期不同阶段的性激素相关受体基因的表达差异，以探讨其在发情周期中的调控作用。结果 大林姬鼠发情周期为4～7 d,发情期平均时长0.97 d,发情间期平均时长2.41 d。发情期雌激素和促黄体生成素水平显著高于发情后期及发情间期(P<0.001),孕激素在发情间期水平显著高于发情前期和发情期(P<0.001)。发情周期中子宫与卵巢在形态和结构上的显著差异，反映了性激素水平的周期性波动对大林姬鼠生殖器官形态与结构变化的关键调控作用。结论 本研究明确划分了大林姬鼠发情周期的4个阶段。不同阶段在细胞形态、激素分泌和生殖器官结构上存在规律性差异。

摘要: 目的 研究一种新的肠上皮特异性Cre转基因小鼠(Vil1-Cre小鼠)其Cre重组酶的原位表达情况。方法 利用Cre诱导表达的Rosa26-YFP荧光报告基因表达系统，通过检测报告基因YFP的表达探究Vil1-Cre小鼠中Cre重组酶的原位表达情况。结果 成体期，Vil1-Cre小鼠的Cre重组酶在十二指肠、空肠、回肠以及结肠等不同部位的肠上皮中全层表达，同时在肾、胰腺、睾丸、卵巢等组织中存在少量表达。胚胎发育阶段，胚胎期第10.5天时Cre重组酶在中肠已有表达，比内源性villin蛋白胚胎期第9.5天开始表达仅迟1 d;胚胎期第11.5天及第12.5天时Cre重组酶在原始横隔、生殖嵴及中肾小管中也有表达。结论 Vil1-Cre小鼠中Cre重组酶的表达模式具有高度的肠上皮细胞特异性及表达活性，可用于构建肠上皮细胞特异性基因修饰小鼠模型及相关研究。