摘要: 贝氏隐孢子虫各期虫体均位于宿主粘膜上皮细胞的带虫空泡中。在虫体与上皮细胞接触处,虫体表膜反复折迭形成营养器。子孢子或裂殖子与粘膜上皮细胞接触后,逐步过渡为球形的滋养体;滋养体经2—3次核分裂、产生含4或8个裂殖子的两代裂殖体,裂殖体以外出芽方式产生裂殖子;裂殖子无微孔,顶端表皮形成3—4个环嵴,裂殖子进一步发育成为配子体;大配子体含有两种类型的成囊体。小配子呈楔形,无鞭毛和顶体,有一个致密的长椭圆形细胞核,小配子表膜内侧有9根膜下微管;孢子化卵囊内含四个裸露的子孢子和一个大残体。本文是有关鸭体内隐孢子虫超微结构的首次报导。

摘要: 采用扫描电镜观察了贝氏隐孢子虫在珍珠鸡体内的发育。大量球形虫体镶嵌于气管和法氏囊微绒毛丛中。气管纤毛消失，微绒毛生发生融合。法氏囊粘膜表面可观察到宿主细胞突起，在突起的表面有数个虫体寄生。滋养体呈球状，平均大小为１．７μｍ。裂殖体拥有４个或８个香蕉状裂殖子。成熟大配子体大小为 ４.２ × ３．３μｍ，在其侧面可观察到锯齿状突起。偶尔能观察到卵囊，其表 面有一明显裂缝。虫体逸出后所留下的带虫空泡似弹坑状，根据其结构可将其分为两类，其中一类为裂殖子或小配子的形成场所，另一类为卵囊的形成场所。

摘要: 从水中检测隐孢子虫卵囊是评价水源传播人类隐孢子虫病风险的第一步 .从水中检出的卵囊的活力需要进行测定才能估计水源爆发的真正风险 .应用聚丙烯盒式过滤器和美国环保局 (USEPA) 16 2 2过滤方法的囊式过滤器(Gelman ,Michigan ,USA) ,分别过滤了当地 (法国鲁昂 )的环境水和供给水 ,并用免疫磁分离技术 (IMS)进行分离 .用免疫荧光检测法 (IFA)从浓缩的水样中检测到了隐孢子虫卵囊 .环境水中的卵囊浓度是每升水中 0 .12～ 2 .7个卵囊 ;供给水中的卵囊浓度是每升水中 0 .0 3～ 0 .0 6个卵囊 .用新生小鼠模型初步评价了检出卵囊的感染力 .结果证明了隐孢子虫卵囊在环境中尤其是水中的广泛分布 ;同时表明 ,评估水源传播的隐孢子虫病的风险时 ,不仅要从水中检出卵囊 ,而且要测定检出的卵囊的活力 .表 1参 2 2

摘要: 我国最新《城市供水水质标准》(2005年6月)提出了关于隐孢子虫和贾第鞭毛虫的控制指标,但其推荐检测方法还没有产生.本文针对美国EPA1623检测方法中的3个关键步骤,在浓缩、分离和染色等过程中进行了相应的改进或替代,并对各种备选的方案进行了探讨和比较分析.结果表明,微孔滤膜过滤→乙酸乙酯福尔马林分离→改良抗酸+铁苏木联合染色具有较好的敏感性,操作简单且成本较低,适宜作为国内普通自来水厂的初级检测方法.图2表4参20

摘要: 本研究以微小隐孢子虫甘油醛-3-磷酸脱氢酶(Cryptosporidium parvum glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, CpGAPDH)为对象，研究其亚细胞定位和酶动力学特征。设计特异性抗原多肽并免疫家兔，获得多克隆抗体，利用亲和纯化法获特异性抗体；经Western blot方法验证该抗体特异性，再通过间接免疫荧光法(IFA)进行蛋白定位。通过原核表达获得GST重组蛋白(GST-CpGAPDH),基于GAPDH的酶促反应利用辅酶NAD(H)或NADP(H)为电子受体或供体的原理，通过吸光度比色法监测反应中NAD(H)/NADP(H)的增加或减少鉴定其酶活性。结果显示，成功获得并纯化抗CpGAPDH抗体；Western blot分析显示该抗体可识别条带大小为40 kDa; IFA结果表明该蛋白主要分布于子孢子胞浆内，部分呈现颗粒状。利用重组蛋白确定了CpGAPDH的酶活性；在两种辅酶中，CpGAPDH更倾向于使用NAD(H)进行酶活反应。结果表明，本研究确定了CpGAPDH在虫体细胞的定位及酶活性检测，为进一步研究其生物学功能奠定了基础。