摘要: 水稻条纹病毒(rice stripe virus, RSV)是一种由灰飞虱Laodelphax striatellus以持久增殖方式传播的重要虫媒植物病毒，严重威胁亚洲国家的水稻生产。RSV在媒介昆虫内的传播需要病毒突破中肠、唾液腺和卵巢等组织屏障，同时需逃逸昆虫免疫防御并调控组织微环境，最终实现病毒的水平和垂直传播，体现了病毒与媒介协同进化的复杂关系。近年来，随着灰飞虱基因组测序和小RNA测序等分子生物学技术的快速发展及分子互作研究，我国在RSV受体识别、免疫逃逸、跨界调控及媒介昆虫行为操纵等方面取得显著进展。本文概述了近10年来我国在RSV虫传机制领域的重要研究成果，包括RSV的水平传播和垂直传播分子机制、 RSV与媒介昆虫免疫系统的动态博弈、病毒对媒介昆虫行为和代谢的调控、 RSV在媒介昆虫和寄主植物中的差异适应机制以及miRNA介导的病毒跨界传播机制，深入解析了RSV-灰飞虱-水稻三者间的分子互作网络，阐明RSV与灰飞虱之间是一种偏向病毒传播的操纵-适应型非对称共生关系。文章进一步指出，未来研究应聚焦病毒跨组织传播的细胞与分子机制、共生微生物对传播效率的调控以及RSV对灰飞虱生理与行为的操控策略，并结合RNA干扰等绿色防控技术，推动发展精准、可持续的RSV阻控新方法，为虫媒病毒病的生态友好治理提供新思路。

摘要: 水稻黑条矮缩病(rice black-streaked dwarf virus disease, RBSDVD)由水稻黑条矮缩病毒(rice black-streaked dwarf virus, RBSDV)引起，是危害我国及东亚地区水稻生产的重大病毒病害，曾造成严重的产量损失。RBSDV隶属于棘突呼肠孤病毒科(Spinareoviridae)斐济病毒属Fijivirus,在自然界中主要通过介体昆虫灰飞虱Laodelphax striatellus以持久、增殖型方式传播。近年来，围绕病毒-介体-寄主水稻互作机制及水稻抗病育种的研究取得了显著进展。在病毒与介体互作方面，RBSDV利用外壳蛋白P10促进介体甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, GAPDH)磷酸化以诱导细胞自噬，并劫持磷脂酰肌醇-3, 5-二磷酸[phosphatidylinositol 3,5-bisphosphate, PI(3,5)P2]以逃避自噬降解；病毒基质蛋白P9-1通过竞争性结合介体26S蛋白酶体亚基RPN8,抑制泛素-蛋白酶体通路以利于病毒积累；此外，病毒还利用灰飞虱糖转运蛋白LsST6跨越中肠屏障，并调控介体miRNA及lncRNA以协助侵染。在病毒与寄主水稻互作方面，病毒编码的P6蛋白作为RNA沉默抑制子，通过介导水稻SUMO结合酶OsSCE1b的降解来抑制寄主抗病毒防御；RBSDV还通过P5-1, P7-2及P8等蛋白精细调控植物激素信号网络，包括抑制茉莉酸生物合成、结合GID2阻断赤霉素信号转导以及干扰生长素通路等，从而促进病毒侵染并导致植株矮化；同时水稻内源的一氧化氮、lncRNA以及表观遗传修饰等通路均被报道参与调控了RBSDV侵染。在抗性育种领域，本文总结了W44和Tetep等抗性种质的发掘进展，重点阐述了OsAP47和OsGLK1等关键抗性基因的克隆与功能鉴定，也讨论了分子标记辅助选择(marker-assisted selection, MAS)、基因编辑和RNA干扰等现代生物技术在抗性育种中的应用成果。未来研究应进一步系统解析“病毒-介体-植物”三者互作及协同进化机制，加速抗性基因的挖掘与利用，关注气候变化及根际微生态对病害流行的影响，并建立病害长期的动态监测与早期预警系统。本综述旨在为水稻黑条矮缩病的综合防控和抗病水稻品种培育提供理论参考与技术支持。

摘要: 【目的】鉴定共生菌Wolbachia调控宿主灰飞虱Laodelphax striatellus生殖的微小RNA(microRNA, miRNA)。【方法】采用小RNA测序技术，对感染及未感染Wolbachia的灰飞虱羽化后第3天雌成虫卵巢内的miRNA进行鉴定，筛选获得差异表达miRNA。将获得的差异表达miRNA与灰飞虱基因组进行比对，确定与参比序列匹配的小RNA;利用miRanda和RNAhybrid软件预测差异表达miRNA的靶基因。运用qRT-PCR检测差异表达miRNA及其靶基因在感染及未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢中的表达量。【结果】从感染及未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢中筛选获得7个差异表达miRNA (novel＿47, novel＿48, novel＿60, novel＿76, novel＿88, novel＿160和novel＿184);未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢中novel＿47表达量显著高于感染Wolbachia的灰飞虱的，而感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢中novel＿184表达量显著高于未感染Wolbachia的灰飞虱的。其余miRNAs (novel＿48, novel＿60, novel＿76, novel＿88和novel＿160)在感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢中表达量极显著高于未感染Wolbachia的灰飞虱的。novel＿47的靶基因LsJHE在感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢内表达量显著高于未感染Wolbachia灰飞虱的，而novel＿48, novel＿160和novel＿184的靶基因(分别为LsMFS,LsCarE25及LsTreT)在未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢内表达量显著高于感染Wolbachia的灰飞虱的，未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢内novel＿60, novel＿76和novel＿88的靶基因(分别为LsCYP315A1,LsPOD及LsJHAMT)表达量极显著高于感染Wolbachia灰飞虱的。【结论】筛选并获得感染及未感染Wolbachia的灰飞虱雌成虫卵巢内7个差异表达miRNA及其对应的靶基因，为探究miRNA在Wolbachia促进灰飞虱雌虫生殖中的作用机制提供了宝贵的候选基因，为利用miRNA或Wolbachia开发针对灰飞虱的新型靶向控制策略提供了潜在分子靶标。

摘要: 3种稻飞虱，包括褐飞虱Nilaparvata lugens、白背飞虱Sogatella furcifera和灰飞虱Laodelphax striatellus，是危害水稻生产的重要害虫。由于杀虫剂的长期使用，3种稻飞虱已经对多种杀虫剂产生了抗性。褐飞虱的抗性演变最为迅速，尤其是对新烟碱类杀虫剂；白背飞虱和灰飞虱则整体抗性积累较缓，对多数药剂仍保持较高敏感性，但对噻嗪酮也显示出抗性风险。3种稻飞虱的抗性机制均能通过上调细胞色素P450多功能氧化酶（CYP450）、谷胱甘肽S-转移酶（GST）等代谢酶的表达来增强解毒能力。总体来看，褐飞虱的抗性主要依赖代谢机制，尤其是细胞色素P450等解毒酶系统的显著上调，同时伴随部分靶标位点的适应性突变，并与水稻抗性品种形成协同适应演化；白背飞虱的抗性则以靶标机制为主，靶蛋白突变频繁出现，代谢机制也参与其中。相比之下，灰飞虱整体抗性水平较低，抗性机制以靶标变化为主，解毒酶参与程度有限，抗性发展速度缓慢。三者在抗性相关基因表达调控、共生菌调节及适应性代谢调节等方面亦呈现出不同特点。本文综述了当前3种稻飞虱抗药性的发生发展、主要抗性机制及其研究进展，并提出了基于分子机制的抗性管理策略，为科学防控和可持续治理提供理论支持。